Определение специфической активности пробиотиков

ОФС.1.7.2.0009.15

 

 

Настоящая общая фармакопейная статья распространяется на методы испытания специфической активности пробиотических производственных штаммов и пробиотиков на их основе, которая определяется количеством жизнеспособных бактерий и активностью кислотообразования или их антагонистической активностью по отношению к тест-штаммам.

Таким образом, описанные в настоящей статье микробиологические методы позволяют определить следующие показатели специфической активности испытуемого препарата или штамма:

- количество жизнеспособных бактерий в 1 дозе*1 иммунобиологического лекарственного препарата (ИЛП) (раздел 1);

- активность кислотообразования (раздел 2);

- антагонистическая активность (раздел 3).

 

Общая часть

 

Требования к специфической активности испытуемого препарата касаются определения количества живых бактерий в 1 дозе лекарственного средства, кислотообразующей активности штаммов-продуцентов, входящих в лакто- и бифидосодержащие пробиотики для медицинского применения, и определения уровня антагонистической активности испытуемого препарата. Контроль испытуемого препарата по показателю "Количество жизнеспособных бактерий в одной дозе лекарственного средства" является обязательным при отработке новых технологий производства лекарственного средства, предварительном и сертификационном контроле, оценке качества и проверке стабильности лекарственных форм в процессе установления срока годности. Определение количества живых микроорганизмов в испытуемой дозе проводят методом серийных разведений, при необходимости, с последующим высевом на питательные среды (Человеческая доза - доза испытуемого препарата, указанная на этикетке или в инструкции по медицинскому применению (листке-вкладыше)).

При проведении контроля поликомпонентных или комбинированных пробиотиков необходимо учитывать количество и соотношение всех видов или штаммов, входящих в состав препарата.

Показатель "Активность кислотообразования" является обязательным при контроле штаммов-продуцентов, входящих в состав лакто- и бифидосодержащих пробиотиков, при предварительном и сертификационном контроле, при оценке качества и проверке стабильности лекарственных форм в процессе установления срока годности.

Показатель "Антагонистическая активность" является обязательным при контроле колисодержащих и споровых пробиотиков для медицинского применения и производственных штаммов. Уровень антагонистической активности ИЛП в отношении штаммов патогенных и условно-патогенных микроорганизмов определяют методом отсроченного антагонизма на плотной среде по зонам задержки роста тест-штаммов.

Производственные штаммы контролируются не реже 1 раза в год.

 

Питательные среды, используемые в испытаниях

 

Для выращивания микроорганизмов, входящих в пробиотики для медицинского применения, используют адекватную для данного вида бактерий и для данной методики питательную среду (если нет других указаний в нормативной документации):

- для лактобактерий - МРС-2, МРС-4, МРС-5, МРС-1; для ацидофильных лактобактерий - стерильное обезжиренное молоко;

- для бифидобактерий - полужидкую модифицированную печеночную среду Блаурокка, среду Блаурокка с натрия азидом, МРС-5;

- для кишечной палочки - среду Эндо, мясопептонный агар (МПА), среду Гаузе N 2 агаризованную;

- для энтерококков - МПА, среду N 1;

- для бактерии рода Bacillus - среду Гаузе N 2 агаризованную, МПА, полусинтетическую среду с дрожжевым диализатом.

Питательные среды для проведения испытаний готовят в соответствии с приведенными ниже указаниями. Также могут использоваться эквивалентные коммерчески доступные среды при условии, что они выдерживают испытания на ростовые свойства. Необходимое значение рН питательных сред устанавливают при температуре °С.

 

Среда МРС-1

 

В 200 мл воды очищенной последовательно растворяют:

 

-	марганец сернокислый	0,05 г
-	цистеин солянокислый или L-цистин	0,10 г
-	магний сернокислый	0,200 г
-	калий фосфорнокислый двузамещенный 3-водный	2,00 г
-	аммония цитрат	2,00 г
-	натрия ацетат (натрий уксуснокислый)	5,00 г
-	печеночный экстракт а) (1:1)	100,0 мл
-	дрожжевой аутолизат б) с содержанием аминного азота %	50,0 мл
-	пептон сухой ферментативный	10,00 г
-	гидролизат обезжиренного молока в)	500,0 мл
-	полисорбат 80	1,00 мл
-	глюкоза	20,00 г

 

Доводят объем среды водой очищенной до 1000 мл; рН среды . Питательную среду разливают в пробирки по 10 , 25 или 30 мл и стерилизуют при температуре °С в течение мин. Срок хранения готовой стерильной среды 2 мес при температуре от 2 до 8°С или не более 1 мес при температуре от 18 до 25°С.

 

Примечание

^а) Приготовление печеночного экстракта с содержанием аминного азота %.

 

-	Печень говяжья	1,0 кг
-	Вода очищенная	1000 мл

 

Стерилизация в автоклаве при температуре °С в течение мин (процесс стерилизации валидируется).

Приготовление: 1,0 кг свежей говяжьей печени очищают от жира, пленок и протоков, нарезают кубиками размером (3x3x3) см, заливают 1 л воды очищенной и кипятят в течение 1,5 - 2 ч. Остывший отвар фильтруют через марлевый фильтр (ткань "миткаль"), количество отвара доводят водой очищенной до 1 л, разливают в бутыли и стерилизуют при температуре °С в течение мин. Срок хранения печеночного экстракта при температуре от 2 до 8°С не более 6 мес или не более 3 мес при комнатной температуре.

^б) Приготовление дрожжевого аутолизата с содержанием аминного азота %.

 

-	Дрожжи хлебопекарные	1000 г
-	Вода питьевая	4000 мл
-	Хлороформ	40 мл

 

Стерилизация в автоклаве при температуре °С в течение мин.

^в) Приготовление гидролизата обезжиренного молока по Богданову.

 

-	Молоко коровье пастеризованное, нежирное (рН )	1000 мл
-	Панкреатин	1,0 г
-	Хлороформ	5,0 мл

 

Стерилизация в автоклаве при температуре °С в течение ( ) мин.

 

Среда МРС-2

 

-	Марганец сернокислый	0,05 г
-	Цистеин солянокислый или L-цистин	0,10 г
-	Магний сернокислый	0,20 г
-	Калий фосфорнокислый двузамещенный 3-водный	2,00 г
-	Аммония цитрат	2,00 г
-	Натрия ацетат	5,00 г
-	Печеночный экстракт (1:1)	100,0 мл
-	Дрожжевой аутолизат с содержанием аминного азота %	50,0 мл
-	Пептон сухой ферментативный	10,00 г
-	Гидролизат обезжиренного молока	500,0 мл
-	Полисорбат 80	1,00 мл
-	Глюкоза	20,00 г
-	Агар микробиологический	1,00 г
-	Вода очищенная	до 1000 мл

 

Значение рН готовой среды . Питательную среду разливают в пробирки по 10 мл и стерилизуют при температуре °С в течение мин. Срок хранения питательной среды 2 мес при температуре от 2 до 8°С или не более 1 мес при температуре от 18 до 25°С.

 

Среда МРС-4

 

В 200 мл воды очищенной последовательно растворяют:

 

-	Марганец сернокислый	0,05 г
-	Цистеин солянокислый или L-цистин	0,10 г
-	Магний сернокислый	0,200 г
-	Калий фосфорнокислый двузамещенный 3-водный	2,00 г
-	Аммония цитрат	2,00 г
-	Натрия ацетат	5,00 г
-	Печеночный экстракт (1:1)	100,0 мл
-	Дрожжевой аутолизат с содержанием аминного азота %	50,0 мл
-	Пептон сухой ферментативный	10,00 г
-	Гидролизат обезжиренного молока	500,0 мл
-	Полисорбат 80	1,00 мл
-	Глюкоза	20,00 г
-	Агар микробиологический	19,0 г

 

Доводят объем среды водой очищенной до 1000 мл (рН ). Питательную среду стерилизуют в автоклаве при температуре °С в течение мин. Срок хранения питательной среды 6 мес при температуре от 2 до 8°С в стерильных герметичных флаконах или не более 3 мес при температуре от 18 до 25°С.

 

Среда МРС-5

 

-	Марганец сернокислый	0,05 г
-	Цистеин солянокислый или L-цистин	0,10 г
-	Магний сернокислый	0,200 г
-	Калий фосфорнокислый двузамещенный 3-водный	2,00 г
-	Печеночный экстракт (1:1)	100,0 мл
-	Дрожжевой аутолизат с содержанием аминного азота %	50,0 мл
-	Пептон сухой ферментативный	10,00 г
-	Гидролизат обезжиренного молока	500,0 мл
-	Полисорбат 80	1,00 мл
-	Глюкоза	20,00 г
-	Агар микробиологический	15,0 г
-	Вода очищенная	до 1000 мл

 

Питательную среду (рН 7,0) стерилизуют в автоклаве при температуре °С в течение мин. Срок хранения питательной среды 6 мес при температуре от 2 до 8°С в стерильных герметичных контейнерах (флаконах) или не более 3 мес при температуре от 18 до 25°С.

Примечание

Приготовление обезжиренного стерильного молока рН ;

показатель кислотности не более 18°Т:

 

-	Молоко сухое обезжиренное	80 г
-	Вода очищенная	до 1000 мл

 

Разливают в пробирки по 10, 25 или 30 мл и стерилизуют при температуре °С в течение мин (процесс стерилизации валидируется). Срок хранения обезжиренного стерильного молока 2 мес при температуре от 2 до 8°С или не более 1 мес при температуре от 18 до 25°С.

 

Модифицированная печеночная среда Блаурокка

 

-	Печеночная вода (1:2) с содержанием аминного азота  мг %	1000 мл
-	Пептон сухой	10 г
-	Натрия хлорид	5 г
-	Лактоза	10 г
-	Цистеин	0,1 г
-	Агар микробиологический	0,75 г

 

Устанавливают требуемое значение рН с помощью 20% раствора натрия гидроксида. Питательные среды разливают в пробирки по 10, 25 или 30 мл и стерилизуют при температуре °С в течение мин (процесс стерилизации валидируется). Срок хранения питательной среды 2 мес при температуре от 2 до 8°С или не более 1 мес при температуре от 18 до 25°С. После 14 сут хранения перед использованием для снижения содержания растворенного кислорода среду следует однократно регенерировать путем нагревания пробирок на водяной бане при температуре 70 - 80°С в течение 10 - 15 мин.

Примечание

Приготовление печеночной воды с содержанием аминного азота ( ) мг %.

 

-	Печень говяжья	0,5 кг
-	Вода очищенная	1000 мл

 

Стерилизация в автоклаве при температуре °С в течение мин (процесс стерилизации валидируется).

0,5 кг свежей говяжьей печени очищают от жира, пленок и протоков, нарезают кубиками размером (3x3x3) см, заливают 1 л воды очищенной и кипятят в течение 1,5 - 2 ч. Остывший отвар фильтруют через марлевый фильтр (ткань "миткаль"), количество отвара доводят водой очищенной до 1 л, разливают в бутыли и стерилизуют при температуре °С в течение мин. Срок хранения - не более 6 мес при температуре от 2 до 8°С или не более 3 мес при температуре от 18 до 25°С.

 

Среда Блаурокка с азидом натрия

 

- Среда Блаурокка	1000 мл
- Натрия азид	0,1 г

 

Среду перемешивают, разливают в пробирки по 10 мл и стерилизуют при температуре °С в течение мин. Срок хранения питательной среды 1 мес при температуре от 2 до 8°С.

 

Среда Гаузе N 2 агаризованная

 

-	Бульон Хоттингера1 с содержанием аминного азота 700 мг %	30 мл
-	Пептон сухой	5 г
-	Натрия хлорид	5 г
-	Глюкоза	10 г
-	Агар микробиологический	30 г
-	Вода очищенная	до 1000 мл

 

Примечание

Приготовление бульона Хоттингера (содержание аминного азота 700 мг %).

 

-	Гидролизат Хоттингера	24,0 г
-	Натрия хлорид	5,0 г
-	Вода очищенная	до 1000 мл

 

Стерилизация в автоклаве при температуре °С в течение мин. Срок хранения питательной среды в течение 6 мес при температуре от 2 до 8°С в стерильных герметичных контейнерах (флаконах).

 

Полусинтетическая среда с дрожжевым диализатом агаризованная

 

-	Марганец хлористый 4-водный или марганец сернокислый	0,01 г
-	Железо(III) сернокислое 7-водное	0,01 г
-	Магний сернокислый 7-водный или магния хлорид 6-водный	0,1 г
-	Кальция хлорид	0,08 г
-	Пептон сухой	0,5 г
-	Дрожжевой диализат с содержанием азота аминного 150 мг %	5,0 мл
-	Глюкоза	10,0 г
-	Агар микробиологический	20-30 г
-	Вода очищенная	до 1000 мл

 

Стерилизация в автоклаве при температуре °С в течение мин. Срок хранения питательной среды 6 мес при температуре от 2 до 8°С в стерильных герметичных контейнерах (флаконах).

 

Мясопептонный агар (МПА)

 

-	Пептон	10,0 г
-	Натрия хлорид	5,0 г
-	Мясная вода	300-500 мл
-	Агар микробиологический	13-20 г

 

В мясную воду вносят 10 г пептона и 5 г натрия хлорида, кипятят на слабом огне при постоянном помешивании до полного растворения добавленных ингредиентов. Приготовленный бульон фильтруют, устанавливают pH 7,2-7,4 и добавляют измельченный агар в количестве, зависящем от его качества и назначения среды. После добавления агара среду кипятят на слабом огне при постоянном перемешивании до полного растворения агара. Разливают в пробирки и флаконы, стерилизуют при температуре 120°С в течение мин. После стерилизации среда, остывая, уплотняется.

Срок хранения готовой среды (pH ) 6 мес при температуре от 2 до 8°С или не более 1 мес при температуре от 18 до 25°С.

 

Мясопептонный бульон (МПБ)

 

- Пептон	10,0 г
- Натрия хлорид	5,0 г
- Мясная вода	1000 мл

 

В мясную воду вносят 10 г пептона и 5 г натрия хлорида, кипятят на слабом огне при постоянном помешивании до полного растворения добавленных ингредиентов. Приготовленный бульон фильтруют, устанавливают pH 7,2-7,4 и разливают в пробирки и флаконы. Стерилизуют при температуре 120°С в течение мин. Срок хранения питательной среды 6 мес при температуре от 2 до 8°С или не более 1 мес при температуре от 18 до 25°С.

 

Примечание

Приготовление мясной воды (1:2).

 

- Мясо - говядина (фарш)	500 г
- Вода очищенная	1000 мл

 

Стерилизация при температуре 121°С в течение 20 мин. Срок хранения 2 мес при температуре от 2 до 8°С и не более 1 мес при температуре от 18 до 25°С.

Перед испытанием, в случае использования плотной питательной среды, по 10-15 или 20-25 мл расплавленной агаризованной питательной среды (при температуре около 45°С) разливают в стерильные чашки Петри диаметром 9 или 12 см (соответственно), оставляют на горизонтальной поверхности и дают среде застыть. Поверхность агаризованных сред перед посевом подсушивают для удаления конденсационной воды и проверки стерильности. Чашки Петри с питательными средами помещают закрытыми и перевернутыми вверх дном в термостат при температуре °С на 48 ч. Агар Эндо подсушивают 40 мин в ламинарном шкафу с открытыми крышками.

 

Раздел 1. Определение количества жизнеспособных бактерий в 1 дозе ИЛП

 

В настоящем разделе изложены общие принципы определения количества живых бактерий в пробиотиках для медицинского применения методом десятикратных разведений с высевом на плотные питательные среды (метод Коха) и глубинного чашечного метода или в жидкие и полужидкие среды (метод предельных разведений). Результаты количественного определения микроорганизмов выражаются в колониеобразующих единицах (КОЕ).

 

Отбор и подготовка образцов для анализа

 

От каждой испытуемой серии препарата пробиотика методом случайной выборки отбирают по 3 испытуемых образца.

Испытания проводят, соблюдая правила асептики.

Каждый образец в отдельности разводят стерильным 0,9% раствором натрия хлорида и перемешивают пипеткой 8-10 раз.

Особенности подготовки испытуемого образца в зависимости от лекарственной формы (если нет других указаний в нормативной документации):

1. Лиофилизаты (флаконы) - каждый образец в отдельности ресуспензируют стерильным 0,9% раствором натрия хлорида (из расчета 1 мл на 1 дозу) и перемешивают пипеткой 8-10 раз, получая исходное разведение.

2. Порошки - содержимое пакета (саше) асептически пересыпают в стерильную колбу вместимостью 250 мл, добавляют 100 мл 0,9% раствора натрия хлорида и перемешивают путем энергичного встряхивания в течение 10 мин, получая разведение 1:100 ( ).

3. Таблетки - каждый образец в отдельности предварительно растирают в стерильной ступке стерильным пестиком до гомогенного состояния и дробно добавляют 0,9% раствор натрия хлорида из расчета 1 мл на 1 дозу и перемешивают пипеткой 8-10 раз, получая исходное разведение.

4. Капсулы - каждый образец в отдельности вносят в стерильные пробирки, добавляют 10 мл стерильного 0,9% раствора натрия хлорида. Пробирки с капсулами помещают на водяную баню при температуре °С. Через 10-30 мин содержимое пробирок перемешивают до гомогенного состояния, получая разведение 1:10 ( ).

5. Суппозитории - каждый образец в отдельности помещают в стерильные пробирки и добавляют предварительно нагретый до температуры °С стерильный 0,9% раствор натрия хлорида до общего объема 10 мл в зависимости от величины средней массы суппозитория испытуемой серии (например, при массе 1,1 г добавляют 8,9 мл 0,9% раствора натрия хлорида, а при массе 2 г - 8 мл физиологического раствора). Пробирки с суппозиториями помещают на водяную баню при температуре °С. Через 10-30 мин содержимое пробирок перемешивают до гомогенного состояния, получая разведение 1:10 ( ).

 

Методика испытания

 

Испытание проводят методом последовательных десятикратных разведений, соблюдая правила асептики. Для этого 1 мл микробной суспензии испытуемого образца (исходное разведение, разведения или ) вносят пипеткой в пробирку, содержащую 9 мл 0,9% раствора натрия хлорида. Затем новой пипеткой 10-15 раз перемешивают, получая следующее разведение ( или ), и затем 1 мл суспензии переносят в следующее разведение. Титрование проводят до разведений, из которых будет произведен высев на питательные среды. Для каждого разведения используют отдельную пипетку.

В случае, если образец содержит 1 дозу, 0,5 мл микробной суспензии испытуемого образца (исходное разведение) пипеткой вносят в пробирку, содержащую 4,5 мл 0,9% раствора натрия хлорида. Затем новой пипеткой 10-15 раз перемешивают, получая следующее разведение и 1 мл суспензии переносят в пробирку с 9 мл 0,9% раствора натрия хлорида, получая разведение . Титрование проводят до разведений, из которых будет произведен высев на питательные среды. Для каждого разведения используют отдельную пипетку.

В зависимости от биологических свойств бактерий, входящих в состав испытуемого образца, используют соответствующую методику испытания.

 

1. Высев на плотные питательные среды

 

1.1 Метод Коха

 

В ряду последовательных десятикратных разведений испытуемого образца из 2 последних разведений (степень разведения зависит от количества КОЕ в 1 дозе исследуемого препарата) по 0,1 мл микробной суспензии высевают на чашки Петри с питательной средой (по 2 чашки на каждое разведение). Суспензию равномерно распределяют по поверхности среды шпателем Дригальского или с помощью стеклянных бус до полного впитывания (высыхания) суспензии. Чашки закрывают и помещают перевернутыми вверх дном в термостат для инкубации.

Посевы инкубируют при температуре °С в течение 24-96 ч в адекватных, в зависимости от вида микроорганизма, условиях (аэробных, микроаэрофильных или анаэробных). При инкубировании в анаэробных или микроаэрофильных условиях чашки Петри с посевами помещают в анаэростат и создают необходимую газовую атмосферу.

Данный метод может быть использован при определении количества живых бактерий каждого вида в поликомпонентных пробиотиках при условии, что бактерии, входящие в состав препарата, образуют визуально различимые по форме и другим признакам колонии.

 

1.2. Глубинный чашечный метод

 

В ряду последовательных десятикратных разведений испытуемого образца из 2 последних разведений (степень разведения зависит от количества КОЕ в исследуемом препарате) по 1,0 мл микробной суспензии стерильной пипеткой вместимостью 1,0 мл вносят в чашки Петри диаметром 90 мм (по 2 чашки на каждое разведение). Добавляют 20-25 мл расплавленной и охлажденной до температуры °С агаризованной питательной среды, закрывают и быстро осторожно перемешивают вращательно-поступательными движениями, не отрывая дна чашки от поверхности стола и не допуская попадания среды на крышку чашки. После застывания агара чашки Петри переворачивают вверх дном и инкубируют в адекватных условиях при температуре °С в течение необходимого для данного микроорганизма времени.

 

Учет результатов

 

По окончании инкубации производят подсчет выросших на чашках Петри колоний и вычисляют содержание живых бактерий в 1 дозе испытуемого образца. При подсчете учитывают чашки, на которых выросло не менее 15 колоний.

Пример расчета содержания живых микробных клеток в 1 дозе испытуемого образца:

- из разведения выросло 42 и 45 колоний; среднее арифметическое равно (42+45) : 2 = 43,5;

- из разведения выросло 410 и 450 колоний; среднее арифметическое равно (410+450) : 2 = 430;

- количество живых бактерий в 1 дозе равно:

.

Умножают среднюю арифметическую числа колоний на степень разведения и в том случае, если высев на чашку Петри сделан в объеме 0,1 мл, умножают на коэффициент 10 для пересчета на 1,0 мл.

 

2. Метод предельных разведений с последующим высевом на жидкие и полужидкие питательные среды

 

2.1. Пробирочный метод наиболее вероятных чисел (определение количества живых ацидофильных лактобактерий)

 

В ряду последовательных десятикратных разведений испытуемого образца (степень разведения зависит от количества КОЕ в испытуемом образце) высевают по 1 мл микробной суспензии от каждого разведения в 2 пробирки с 9 мл стерильного обезжиренного молока. Отмечают, из какого именно разведения сделан посев. Разведение препарата в 0,9% растворе натрия хлорида соответствует разведению в молоке. Для контроля среды добавляют 4 незасеянные пробирки с молоком. Засеянные и контрольные пробирки инкубируют при температуре °С в течение 3-4 сут.

По окончании инкубации определяют количество пробирок со свернувшимся молоком. Из сгустка с культурой готовят мазки и окрашивают по Граму. Если в мазках видны характерные бактерии и отсутствует посторонняя микрофлора, то данное разведение учитывают, как содержащее микроорганизмы данного вида. В случае сквашивания молока в контрольных пробирках и при обнаружении посторонней микрофлоры в мазках, контроль проводят на новой партии среды.

 

Учет результатов

 

При подсчете количества живых особей используют таблицу Мак-Креди (табл. 1). Сначала составляют числовую характеристику. Она состоит из 3 цифр: на первое место (слева) ставят цифру, равную числу пробирок со свернувшимся молоком, взятых в том последнем разведении, где молоко свернулось во всех пробирках (например, 2 пробирки разведения ).

Следующие две цифры обозначают число пробирок со свернувшимся молоком в 2 последующих разведениях (например, в 1 пробирке разведения и в 1 пробирке разведения ).

Числовая характеристика результата будет 211.

По таблице Мак-Креди находят вероятное число, соответствующее полученной цифровой характеристике (в нашем случае 13), умножают его на разведение, которому соответствует первая цифра числовой характеристики (в данном примере - ). Тогда количество живых особей микроорганизмов в 1 дозе составляет .

 

Таблица 1 - Таблица Мак-Креди, используемая при подсчете количества живых ацидофильных лактобактерий

 

Числовая характеристика	Наиболее вероятное число микроорганизмов при посеве в 2 параллельные пробирки
200	2,5
201	5,0
202	-
210	6,0
211	13,0
212	20,0
220	25,0
221	70,0

 

2.2. Пробирочный метод учета колоний в полужидкой среде

 

Из разведений препарата (степень разведения зависит от количества КОЕ в испытуемом образце) высевают по 1 мл микробной суспензии в пробирки, содержащие 9 мл полужидкой питательной среды. Отмечают, из какого именно разведения сделан посев. Разведение препарата в 0,9% растворе натрия хлорида соответствует разведению в питательной полужидкой среде.

Посевы инкубируют при температуре °С в зависимости от вида микроорганизма в течение 1-6 сут. По окончании инкубации отмечают разведения, в которых имеется рост типичных колоний для данного вида микроорганизмов.

 

Учет результатов

 

В ряду последовательных десятикратных разведений испытуемого образца в полужидкой питательной среде должно наблюдаться 10-кратное уменьшение количества колоний микроорганизмов.

Количество живых бактерий в дозе испытуемого препарата вычисляют путем умножения количества колоний в пробирке на величину разведения микробной суспензии в данной пробирке (объем вносимого материала в 1,0 мл дает коэффициент умножения 1, который не влияет на конечный результат при вычислении).

 

3. Определение количества живых бактерий в поликомпонентных пробиотиках

 

3.1/ Комбинированный метод (определение количества бифидо- и колибактерий)

 

Для определения количества живых бактерий в составе препарата пробиотика из соответствующих последовательных десятикратных разведений испытуемого образца в 0,9% растворе натрия хлорида (с по ) проводят высевы на среду Блаурокка с натрия азидом (учет бифидобактерий) и на среду Эндо (учет колибактерий).

Для определения количества бифидобактерий по 1 мл микробной суспензии из разведений высевают в пробирки, содержащие 9 мл полужидкой питательной среды Блаурокка с азидом натрия (отмечая разведение, из которого сделан посев). При этом учитывают, что разведение препарата в 0,9% растворе натрия хлорида соответствует разведению в среде Блаурокка с азидом натрия. Посевы в среде Блаурокка с азидом натрия инкубируют при температуре °С в течение 4 - 5 сут.

Для определения количества кишечных палочек делают посев по 0,1 мл микробной суспензии из разведений испытуемого образца на чашки Петри со средой Эндо (по 2 чашки от каждого разведения). Суспензию равномерно распределяют по поверхности среды Эндо шпателем Дригальского до полного впитывания (высыхания) суспензии. Чашки закрывают и помещают перевернутыми вверх дном в термостат для инкубации. Посевы на среде Эндо инкубируют при температуре °С в течение 18-24 ч.

 

Учет результатов

 

В среде Блаурокка с натрия азидом по окончании инкубации отмечают разведения, в которых имеется рост колоний в виде "гвоздиков". Количество живых бактерий в дозе вычисляют путем умножения количества колоний в пробирке на величину разведения микробной суспензии в данной пробирке.

На среде Эндо по окончании инкубации производят подсчет выросших на чашках Петри колоний и вычисляют содержание живых бактерий в 1 дозе препарата. При подсчете учитывают чашки, на которых выросло не менее 15 колоний. Пример для расчета аналогичен описанному в подразделе 1.

 

Раздел 2. Активность кислотообразования

 

Кислотообразующую активность штаммов-продуцентов, входящих в состав лакто- и бифидосодержащих пробиотиков для медицинского применения определяют по титруемой кислотности при культивировании бактерий в адекватной питательной среде. Испытание количественного определения кислотообразующей активности проводят методом кислотно-основного титрования.

Для выращивания бифидобактерий используют полужидкую модифицированную печеночную среду Блаурокка, для лактобактерий - МРС - 1 или стерильное обезжиренное молоко, если нет других указаний в нормативной документации.

Реактивы, используемые в испытании:

- титрованный 0,1 М раствор натрия гидроксида;

- индикатор - 1% раствор фенолфталеин.

 

Особенности отбора и подготовки образцов для анализа

 

От каждой испытуемой серии лекарственного средства, независимо от ее объема, методом случайной выборки отбирают по 2 образца. В случае, если испытуемый образец (т.е. таблетка/капсула/суппозиторий) содержит 1 дозу, то в 1 образец объединяют 3 таблетки/капсулы/суппозитория.

Испытания проводят, соблюдая правила асептики.

Особенности подготовки испытуемого образца в зависимости от лекарственной формы (если нет других указаний в нормативной документации):

1. Лиофилизаты - испытуемый образец (каждый образец в отдельности) разводят стерильным 0,9% раствором натрия хлорида из расчета 1 мл на 1 дозу препарата и перемешивают пипеткой 8-10 раз.

По 2,5 мл полученной суспензии каждого образца вносят в пробирки вместимостью 50 мл, содержащие по 25 мл питательной среды. Пробирки с посевами испытуемых образцов помещают в термостат при температуре °С и инкубируют в течение 48 - 72 ч (сроки инкубации зависят от вида микроорганизма).

2. Таблетки - каждый образец в отдельности предварительно растирают (асептически) в ступке до гомогенного состояния и дробно добавляют 0,9% раствор натрия хлорида из расчета 1 мл на 1 дозу и перемешивают пипеткой 8-10 раз.

По 2,5 мл полученной суспензии каждого образца вносят в пробирки вместимостью 50 мл, содержащие по 25 мл питательной среды. Пробирки с посевами испытуемых образцов помещают в термостат при температуре °С и инкубируют в течение 48 - 72 ч (сроки инкубации зависят от вида микроорганизма).

3. Порошки - содержимое саше асептично пересыпают в пробирку, вместимостью 50 мл, содержащую 25 мл питательной среды, и перемешивают. Пробирки с посевами испытуемых образцов помещают в термостат при температуре °С и инкубируют в течение 48 - 72 ч (сроки инкубации зависят от вида микроорганизма).

4. Капсулы - каждый образец в отдельности вносят в пробирки вместимостью 50 мл, содержащие по 30 мл питательной среды адекватной для вида микроорганизма, входящего в состав препарата. Пробирки помещают на водяную баню при температуре °С. Через 20-30 мин полученную суспензию перемешивают до гомогенного состояния. Пробирки с посевами испытуемых образцов помещают в термостат при температуре °С и инкубируют в течение 48 - 72 ч (сроки инкубации зависят от вида микроорганизма).

5. Суппозитории - каждый образец в отдельности вносят в пробирки вместимостью 50 мл, содержащие по 30 мл питательной среды, адекватной для вида микроорганизма, входящего в состав препарата. Пробирки помещают на водяную баню при температуре °С. Через 20-30 мин полученную суспензию перемешивают до гомогенного состояния. Пробирки с посевами испытуемых образцов помещают в термостат при температуре °С и инкубируют в течение 48 - 72 ч (сроки инкубации определяются видом микроорганизма).

 

Примечание

После окончания инкубации суспензию в пробирках освобождают от липофильной суппозиторной основы одним из следующих способов:

- сразу после окончания инкубирования при температуре посевов °С стерильной пипеткой удаляют растопленный верхний слой жира;

- пробирки охлаждают при температуре от 2 до 8°С в течение мин, затем застывшую суппозиторную основу снимают асептически пастеркой с загнутым концом или бактериологической петлей.

 

Методика испытания

 

Уровень кислотообразования определяют в каждом из 2 образцов. После окончания инкубации содержимое пробирки перемешивают отдельной пипеткой 8-10 раз. Каждую пробу в объеме 10 мл вносят в отдельную коническую колбу или стакан вместимостью 100 мл.

Штаммы-продуценты, выращенные в стерильном обезжиренном молоке, образуют сгусток. Образовавшийся сгусток разбивают путем тщательного перемешивания (10-12 раз) пипеткой вместимостью 10 мл. После этого 10 мл микробной суспензии переносят из пробирки с культуральной средой в коническую колбу вместимостью 100 мл, содержащую 20 мл воды очищенной. Колбу интенсивно встряхивают для равномерного перемешивания содержимого, затем прибавляют 2-3 капли 1% раствора фенолфталеина.

Полученную суспензию титруют 0,1 М раствором натрия гидроксида до появления стойкого слабо-розового окрашивания и достижения рН (контролируют потенциометрически), при этом учитывают количество миллилитров 0,1 М раствора натрия гидроксида, пошедшее на титрование.

 

Учет результатов

 

Кислотность выражают в градусах Тернера (°Т) и вычисляют по формуле:

 

,

 

где: А - количество миллилитров 0,1 М раствора натрия гидроксида, пошедшее на титрование 10 мл исследуемой микробной суспензии;

К - поправка к титру 0,1 М раствора натрия гидроксида;

10 - объем микробной суспензии, мл.

Пример расчета: на титрование 10 мл микробной суспензии пошло 10,6 мл 0,1 М раствора натрия гидроксида, где К = 1,03, тогда:

 

°Т.

 

Вычисляют средний показатель из 2 параллельных проб от каждого образца (пробирки) и средний показатель из 2 образцов (пробирок) при условии, если показатель активности кислотообразования каждого из них был не ниже регламентированного.

 

Раздел 3. Антагонистическая активность

 

Антагонистическую активность в отношении патогенных и условно-патогенных микроорганизмов оценивают как у штаммов-продуцентов, так и у препаратов пробиотиков, полученных на их основе. Определение антагонистической активности штаммов-продуцентов, входящих в пробиотики для медицинского применения, проводят с помощью метода отсроченного антагонизма.

При проведении испытания применяют питательную среду, адекватную для данного вида бактерий (если нет других указаний в нормативной документации):

- для лактобактерий и бифидобактерий - среду МРС-5;

- для кишечной палочки и споровых пробиотиков - среду Гаузе N 2.

 

Тест-штаммы микроорганизмов

 

Тест-штаммы микроорганизмов, используемые в испытании, приведены в табл. 2. Их получают в лиофилизированном виде (в ампулах) из Государственной коллекции патогенных микроорганизмов ФГБУ "НЦЭСМП" (если нет других указаний в нормативной документации) с сертификатом соответствия (паспортом на штамм).

 

Таблица 2 - Тест-штаммы микроорганизмов, используемых в испытаниях по отсроченному антагонизму

 

Тест-штамм микроорганизма	Номер штамма
Staphylococcus aureus	ATCC 6538 (FDA 209Р)
Escherichia coli	О157
Shigella flexneri	170, 337
Shigella sonnei	5063
Proteus mirabilis	H-237 или 56/10
Proteus vulgaris	177 или 401
Candida albicans	ATCC10231

 

Восстановление лиофилизированных тест-штаммов микроорганизмов

 

Ампулы с тест-культурами микроорганизмов вскрывают в асептических условиях в соответствии с инструкцией производителя.

Для восстановления жизнеспособности культуры необходимо не менее двух пересевов на адекватной питательной среде (соответствующей потребностям используемого микроорганизма) с инкубацией в стандартных условиях. Для получения изолированных колоний второй пересев культуры тест-штамма проводят на адекватной плотной питательной среде при инкубации в стандартных условиях.

Температура инкубации посевов бактерий °С, грибов - °С, если нет других указаний в нормативной документации.

По окончании инкубации изучают морфологию выросших колоний, микроскопируют мазки, окрашенные по Граму, изучают биохимические свойства с использованием тест-систем, разрешенных к использованию. Тест-штамм микроорганизма должен обладать типичными морфологическими, тинкториальными, культуральными, биохимическими свойствами в соответствии с представленным сертификатом коллекции.

Тест-штаммы микроорганизмов в лиофилизированном виде хранятся при температуре °С в течение 24 мес.

Допускается не более 5 пассажей от исходной культуры.

Приготовление тест-штаммов микроорганизмов для испытания. Для испытания используют культуры, выращенные в течение ч, второго или третьего пассажа, которые инкубируют на адекватной плотной питательной среде в адекватных условиях. Выросшую чистую культуру смывают 0,9% раствором натрия хлорида с поверхности плотной питательной среды. Полученную суспензию собирают в стерильную посуду (флакон, пробирку и т.д.). Доводят концентрацию микробных клеток в полученной суспензии в соответствии со стандартным образцом мутности 5 ОЕ в соответствии с ОФС "Определение концентрации микробных клеток".

 

Отбор и подготовка образцов для анализа

 

Методом случайной выборки отбирают образцы от каждой серии препарата. Посевы проводятся в стерильных условиях.

Пробиотические производственные штаммы-продуценты (лиофилизаты) восстанавливают до первоначально высушенного объема (но не менее микробных клеток/мл), добавляя в лиофилизат стерильный 0,9% раствор натрия хлорида.

Особенности подготовки испытуемого образца препарата пробиотиков в зависимости от лекарственной формы (если нет других указаний в нормативной документации):

1. Лиофилизаты - разводят стерильным 0,9% раствором натрия хлорида из расчета 1 мл на 1 дозу и перемешивают пипеткой 8-10 раз.

2. Таблетки - предварительно растирают в ступке (асептически) до гомогенного состояния дробно добавляют 0,9% раствор натрия хлорида из расчета 1 мл на 1 дозу и перемешивают пипеткой 8-10 раз.

3. Порошки - содержимое пакета (саше) высыпают в пробирку, содержащую 25 мл стерильного 0,9% раствора натрия хлорида, и перемешивают путем энергичного встряхивания в течение 10 мин.

4. Капсулы - содержимое капсулы вносят в пробирку, добавляют 1 мл стерильного 0,9% раствора натрия хлорида и перемешивают до гомогенного состояния.

5. Суппозитории - вносят в пробирку, добавляют до общего объема 10 мл стерильный 0,9% раствор натрия хлорида, предварительно нагретый до температуры °С. Пробирки с суппозиториями помещают на водяную баню при температуре °С. Через 10-30 мин содержимое пробирок перемешивают до гомогенного состояния и освобождают от жировой основы (как описано выше в разделе 2).

 

Методика испытания

 

Полученную суспензию испытуемого образца перемешивают и высевают бактериологической петлей диаметром ( ) мм на 6 чашек Петри с питательной средой, проводя по 2 параллельных штриха длиной, равной диаметру чашки.

После инкубирования в течение 48-96 ч при температуре °С в адекватных (аэробных, микроаэрофильных или анаэробных) условиях в зависимости от вида микроорганизма к выросшей культуре испытуемого образца подсевают культуры тест-штаммов (в соответствии с требованиями нормативной документации). Подсев тест-штаммов производят петлей диаметром  мм в направлении, перпендикулярном зоне роста изучаемого микроорганизма, и не касаясь его. Чашки Петри перевернутые вверх дном инкубируют при температуре °С в течение 18-20 ч (если нет других указаний в нормативной документации).

Контролем роста тест-штаммов служит их параллельный посев на чашки с той же питательной средой без испытуемой культуры.

 

Учет результатов

 

Учитывают величину зоны отсутствия роста тест-штамма, выраженную в мм. Чем больше величина угнетения роста тест-культур, тем выше антагонистическая активность испытуемого штамма.

Если нет других указаний в нормативной документации, антагонистическую активность штаммов-продуцентов, входящих в пробиотики для медицинского применения, считают высокой, если:

- зоны угнетения роста тест-штаммов не менее 20 мм - для штаммов-продуцентов, входящих в лактосодержащие пробиотики;

- зоны угнетения роста тест-штаммов не менее 15 мм - для штаммов-продуцентов, входящих в коли-, бифидосодержащие пробиотики;

- зоны угнетения роста тест-штаммов не менее 10 мм - для штаммов-продуцентов, входящих в споросодержащие пробиотики.